[صفحه اصلی ]   [Archive] [ English ]  
:: صفحه اصلي :: درباره نشريه :: آخرين شماره :: تمام شماره‌ها :: جستجو :: ثبت نام :: ارسال مقاله :: تماس با ما ::
بخش‌های اصلی
صفحه اصلی::
اطلاعات نشریه::
آرشیو مجله و مقالات::
برای نویسندگان::
برای داوران::
ثبت نام و اشتراک::
تماس با ما::
تسهیلات پایگاه::
بایگانی مقالات زیر چاپ::
::
جستجو در پایگاه

جستجوی پیشرفته
..
دریافت اطلاعات پایگاه
نشانی پست الکترونیک خود را برای دریافت اطلاعات و اخبار پایگاه، در کادر زیر وارد کنید.
..
پایگاه های نمایه شده




..
:: دوره 2، شماره 1 - ( 1-1405 ) ::
جلد 2 شماره 1 صفحات 106-99 برگشت به فهرست نسخه ها
شناسایی گونه‌ Plasmodium به عنوان عامل بیمارگر بالقوه برای کرم غوزه پنبه در شمال غرب ایران
پریناز شیبانی ، منیژه جمشیدی* ، رضا خاک ور ، سویل نعمت الهی
چکیده:   (737 مشاهده)
مقدمه: کرم غوزه پنبه (Helicoverpa armigera) از آفات عمده کشاورزی در دنیا و ایران می ‏باشد که لاروهای آن می ‏توانند به بیش از 120 نوع محصول کشاورزی ازجمله پنبه، یونجه، گوجه ‏فرنگی، سیب ‏زمینی، تنباکو، ذرت، برنج، سورگوم، انواع حبوبات، سبزیجات و چندین گیاه زینتی آسیب وارد کنند. راه ‏های مختلفی برای کنترل این آفت پیشنهاد شده است که یکی از بی‏ خطرترین آن‏ ها کنترل بیولوژیک با استفاده از عوامل میکروبی می ‏باشد.
مواد و روش­ ها: در تحقیق حاضر طی تابستان سال ‏های 1399-1398، چندین مزرعه سبزیجات اعم از گوجه فرنگی، بادمجان و فلفل در استان آذربایجان‏ شرقی برای جمع ‏آوری لارو کرم غوزه پنبه مورد بررسی قرار گرفت. حدود 52 لارو ظاهراً بیمار به طور جداگانه از چندین مزرعه گوجه فرنگی جمع آوری شد. لاروهای جمع‏ آوری شده در شرایط استریل و خنک به آزمایشگاه منتقل گردید. نمونه ‏ها برای یافتن عوامل میکروبی مسری و کشنده مورد بررسی قرار گرفتند.
نتایج: در دوازده نمونه، هیچ گونه باکتری یا قارچ بیماری زا بیمارگر حشرات جداسازی نگردید ولی کماکان عصاره لاروهای بیمار خاصیت کشندگی سرایت کننده از خود نشان می ‏داد. با توجه به عدم عبور عامل کشنده از فیلترهای زیستی 0/45 mmµ فرضیه ویروسی بودن عامل بیماری زا رد گردید. مطالعه میکروسکوپی نشان داد این نمونه احتمالاً حاوی نوعی تک سلولی یوکاریوتیک می‏ باشد. استخراج DNA به روش CTAB انجام و نمونه DNA کل (total-DNA) حاوی ژنوم حشره میزبان همراه با بیمارگر برای توالی ‏یابی کل (Whole genome sequencing) ارسال گردید.
بحث و نتیجه گیری: نتیجه آنالیزهای مولکولی نشان داد که به احتمال زیاد نمونه ‏های جمع‏ آوری شده آلوده به نوعی آپی کمپلکسای غیرقابل کشت از گروه هاگ‏داران جنس Plasmodium و متعلق به  Plasmodium yoelii می‏ باشد.
واژه‌های کلیدی: تک سلولی، بیوکنترل، سبزیجات، Plasmodium yoelii، Helicoverpa armigera
متن کامل [PDF 892 kb]   (269 دریافت)    
نوع مطالعه: مروری | موضوع مقاله: تخصصي
فهرست منابع
1. Ajamhassani, M., 2015. Study on morphology and abundance of hemocytes in spurge hawk moth Hyles euphorbiae Linnaeus (Lepidoptera: Sphingidae). Plant Protection (Scientific Journal of Agriculture). 38(3): 49-62. (In Persian)
2. Atashi, N., Shishehbor, P., Seraj, A.A., Rasekh, A., Hemmati, S.A. and Riddick, E.W., 2021. Effects of Helicoverpa armigera egg age on development, reproduction, and life table parameters of Trichogramma euproctidis. Insects. 12(7): 569. doi: 10.3390/insects12070569 [DOI]
3. Azizpour, N., Nematollahi, S., Khakvar, R., Jamshidi, M. and Norouzi-Beirami, M.H., 2022. Identification of Endophytic Microbiota of Phytoplasma-Infected Russian Olive Trees “Elaeagnus angustifolia L.” in the Northwest of Iran. Forests. 13(10): 1684. doi: 10.3390/f13101684 [DOI]
4. Baghery, F., Fathipour, Y. and Naseri, B., 2013. Nutritional indices of Helicoverpa armigera (Lepidoptera: Noctuidae) on seeds of five host plants. Applied Entomology and Phytopathology. 80(2): 5-12. (In Persian)
5. Banerjee, S., Hess, D., Majumder, P., Roy, D. and Das, S., 2004. The Interactions of Allium sativum leaf agglutinin with a chaperonin group of unique receptor protein isolated from a bacterial endosymbiont of the mustard aphid. J. Biol. Chem. 279(22): 23782-23789. doi: 10.1074/jbc.M401405200 [DOI]
6. Baumann, P., 2005. Biology of bacteriocyte-associated endosymbionts of plant sap-sucking insects. Annu. Rev. Microbiol. 59: 155-189. doi: 10.1146/annurev.micro.59.030804.121041 [DOI]
7. Carlton, J.M., Samuel, V., Angiuoli, B.B., Suh, T.W., Kooij, M.P., Joana, C. and Silva, M.D., 2002. Genome sequence and comparative analysis of the model rodent malaria parasite Plasmodium yoelii. Nature. 419: 512-519.
8. Cordeau, S., Triolet, M., Wayman, S. and Steinberg, C., 2016. Bioherbicides: Dead in the water? A review of the existing products for integrated weed management. Crop Protection. 87: 44-49. doi: 10.1016/J.CROPRO.2016.04.016 [DOI]
9. Douglas, A.E., 1998. Nutritional interactions in insect microbial symbioses: aphids and their symbiotic bacteria Buchnera. Annu. Rev. Entomol. 17-37.
10. Du, M., Yu, J., Zhou, Y., Wang, X., Ma, T., Tan, X. and Zhou, H., 2020. Differentiation of symbiotic bacteria is new evidence for two genetic clades of Aphelinus mali (Hymenoptera: Aphelinidae) in China. Oriental Insects. 54(4): 447-464. https://doi.org/10.1080/00305316.2019.1671252 [DOI]
11. Ferrari, J. and Vavre, F., 2011. Bacterial symbionts in insects or the story of communities affecting communities. Philos. Trans. R. Soc. Lond. B. Biol. Sci. 366(1569): 1389-1400. doi: 10.1098/rstb.2010.0226 [DOI]
12. Gu, M., Xue, Z., Lv, S., Cai, Y., Zhang, L. and Gao, X., 2022. Corynebacterium sp. 2-TD mediated toxicity of 2-Tridecanone to Helicoverpaarmigera. Toxins. 14(10): 698. doi: 10.3390/toxins14100698 [DOI]
13. Jangra, S. and Ghosh, A., 2022. Rapid and zero-cost DNA extraction from soft-bodied insects for routine PCR based applications. PLoS ONE. 17(7): e0271312. doi: 10.1371/journal.pone.0271312 [DOI]
14. Kary, N.E., Alizadeh, Z. and Dunphy, G., 2022. Evolutionary distinction between the geographical isolates of Beauveria bassiana from Iran and their efficacy against Helicoverpa armigera. International Journal of Tropical Insect Science. 42: 2083-2092. doi: 10.1007/s42690-022-00729-2 [DOI]
15. Kikuchi, Y., 2009. Endosymbiotic bacteria in insects: their diversity and cultural-ability. Microbes and Environments. 24(3): 195-204. doi: 10.1264/jsme2.me09140s [DOI]
16. Kononchuk, A.K., Malysh, S.M., Rumiantseva, A.C., Kireeva, D.S., Gerus, A.V. and Zhuravlyov, V.S., 2022. Molecular detection of endosymbionts in local populations of Helicoverpa armigera (Lepidoptera: Noctuidae) in European part of Russia. Herald of Plant Protection. 105(1): 50-61. doi: 10.31993/2308-6459-2022.105-1-15260 [DOI]
17. Lamelas, A., Gosalbes, M.J., Manzano-Marín, A., Peretó, J., Moya, A. and Latorre, A., 2011. Serratia symbiotica from the Aphid Cinaracedri: A missing link from facultative to obligate insect endosymbiont. PLOS Genetics. 7(11): e1002357. doi: 10.1371/journal.pgen.1002357 [DOI]
18. Mojeni, T.D., Bayat, A.H., Nouri, G.G. and Shojaei, M., 2005. Study on bioregional aspects of cotton bollworm, Helicoverpa armigera Hb. (Lepidoptera: Noctuidae), in the cotton fields of Golestan province. The J. Agri. Sci. 97-115.
19. Moran, N.A., McCutcheon, J.P. and Nakabachi, A., 2008. Genomics and evolution of heritable bacterial symbionts. Annu. Rev. Genet. 42: 165-190. doi: 10.1146/annurev.genet.41.110306.130119 [DOI]
20. Moran, N.A., Russell, J.A., Koga, R. and Fukatsu, T.T., 2005. Evolutionary relationships of three new species of Enterobacteriaceae living as symbionts of aphids and other insects. Applied and Environmental Microbiology. 71(6): 3302-3310. doi: 10.1128/AEM.71.6.3302-3310.2005 [DOI]
21. Perera, O.P., Allen, K.C., Jain, D., Purcell, M., Little, N.S. and Luttrell, R.G., 2015. Rapid identification of Helicoverpa armigera and Helicoverpa zea (Lepidoptera) using ribosomal RNA internal transcribed spacer 1. Journal of Insect Science. 15: 1-10. doi: 10.1093/jisesa [DOI]
22. Sabri, A., Leroy, P., Haubruge, E., Hance, T., Frère, I., Destain, J. and Thonart, P., 2011. Isolation, pure culture and characterization of Serratia symbiotica sp. nov., the R-type of secondary endosymbiont of the black bean aphid Aphis fabae. International Journal of Systematic and Evolutionary Microbiology. 61(9): 2081-2088. doi: 10.1099/ijs.0.024133-0 [DOI]
23. Shinde, A.A., Shaikh, F.K., Gadge, P.P., Padul, M.V., Govindwar, S.P. and Kachole, M.S., 2019. Conserved nature of Helicoverpa armigera gut bacterial flora on different host plants and in vitro interactions with PI proteins advocates role in host digestive physiology. Journal of the Saudi Society of Agricultural Sciences. 18(2): 141-149. doi: 10.1016/j.jssas.2017.03.004 [DOI]
24. Sinden, R.E., 2002. Molecular interactions between Plasmodium and its insect vectors. Cel Microbiol. 4(11): 713-724. doi: 10.1046/j.1462-5822.2002.00229.x [DOI]
25. Skaljac, M., Kirfel, P., Grotmann, J. and Vilcinskas, A., 2018. Fitness costs of infection with Serratia symbiotica are associated with greater susceptibility to insecticides in the pea aphid Acyrthosiphon pisum. Pest Management Science. 74(8): 1829-1836. doi: 10.1002/ps.4881 [DOI]
26. Vigneron, A. and Kaltenpoth, M., 2022. Symbiosis: Creating a tractable intracellular insect-microbe association. Current Biology. 32(18): 943-946. doi: 10.1016/j.cub.2022.08.011 [DOI]
27. Wang, Y., Cai, Q.N., Zhang, Q.W. and Han, Y., 2006. Effect of the secondary substances from wheat on the growth and digestive physiology of cotton bollworm Helicoverpa armigera (Lepidoptera: Noctuidae). European Journal of Entomology. 103(1): 255-258. doi: 10.14411/eje.2006.030 [DOI]
28. Xiang, H., Wei, G.F., Jia, S., Huang, J., Miao, X.X., Zhou, Z., Zhao, L.P. and Huang, Y.P., 2006. Microbial communities in the larval midgut of laboratory and field populations of cotton bollworm (Helicoverpa armigera). Canadian Journal of Microbiology. 52(11): 1085-1092. doi: 10.1139/w06-064 [DOI]
29. Xu, P., Liu, Y., Graham, R.I., Wilson, K. and Wu, K., 2014. Densovirus is a mutualistic symbiont of a global crop pest (Helicoverpa armigera) and protects against a baculovirus and BT biopesticide. PLoSPathog. 10(10): e1004490. doi: 10.1371/journal.ppat.100449 [DOI]
30. Zepeda-Paulo, F. and Lavandero, B., 2023. Diversity of endosymbiotic bacteria in the pea aphid (Acyrthosiphon pisum) on alfalfa in Chile. Chilean journal of agricultural research. 83(1): 63-69. doi: 10.4067/S0718-58392023000100063 [DOI]
31. Yaman, M., Kıran, K. and Radek, R., 2023. Mattesia cf. geminata, an ant-pathogenic neogregarine (Apicomplexa: Lipotrophidae) in two Temnothorax species (Hymenoptera: Formicidae). Parasitol Research. 122(7): 1573-1579. doi: 10.1007/s00436-023-07860-0 [DOI]
32. Plischuk, S., Quintana, S., Fernandez De Landa, G., Revainera, P.D., Haramboure, M. and Lange, C.E., 2023. Detection of Apicystis bombi (Apicomplexa: Neogregarinorida) in carpenter bees of Argentina. International Jourmal of Parasitol Parasites Wildl. 21: 43-46. doi: 10.1016/j.ijppaw.2023.03.008. [DOI]
33. Ibrahim, M.A., Griko, N., Junker, M. and Bulla, L.A., 2010. Bacillus thuringiensis: a genomics and proteomics perspective. Bioengineered Bugs. 1(1): 31-50. doi: 10.4161/bbug.1.1.10519 [DOI]
34. Ishiwata, S., 1901. On a kind of severe flacherie (sotto disease). DainihonSanshi Kaiho. 114: 1e5.
35. Yaman, M., Aslan, I., Çalmaşur, Ö. and Sahin, F., 2005. Two bacterial pathogens of Helicoverpa armigera (Hübner) (Lepidoptera: Noctuidae). Proceedings of the Entomological Society of Washington. 107(3): 623-626.
ارسال پیام به نویسنده مسئول

ارسال نظر درباره این مقاله
نام کاربری یا پست الکترونیک شما:

CAPTCHA


XML   English Abstract   Print


Download citation:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:

Sheibani P, Jamshidi M, Khakvar R, Nematollahi S. Identification of a species of Plasmodium sp. as a potential biocontrol agent for cotton bollworm in northwest Iran. , Journalaer. 2026; 2 (1) :99-106
URL: http://journalaer.com/article-1-98-fa.html

شیبانی پریناز، جمشیدی منیژه، خاک ور رضا، نعمت الهی سویل. شناسایی گونه‌ Plasmodium به عنوان عامل بیمارگر بالقوه برای کرم غوزه پنبه در شمال غرب ایران. , پژوهش های محیط زیست جانوری. 1405; 2 (1) :99-106

URL: http://journalaer.com/article-1-98-fa.html



بازنشر اطلاعات
Creative Commons License این مقاله تحت شرایط Creative Commons Attribution-NonCommercial 4.0 International License قابل بازنشر است.
دوره 2، شماره 1 - ( 1-1405 ) برگشت به فهرست نسخه ها
پژوهش های محیط زیست جانوری Journal of Animal Environmental Research
Persian site map - English site map - Created in 0.13 seconds with 39 queries by YEKTAWEB 4780