[صفحه اصلی ]   [Archive] [ English ]  
:: صفحه اصلي :: درباره نشريه :: آخرين شماره :: تمام شماره‌ها :: جستجو :: ثبت نام :: ارسال مقاله :: تماس با ما ::
بخش‌های اصلی
صفحه اصلی::
اطلاعات نشریه::
آرشیو مجله و مقالات::
برای نویسندگان::
برای داوران::
ثبت نام و اشتراک::
تماس با ما::
تسهیلات پایگاه::
بایگانی مقالات زیر چاپ::
::
جستجو در پایگاه

جستجوی پیشرفته
..
دریافت اطلاعات پایگاه
نشانی پست الکترونیک خود را برای دریافت اطلاعات و اخبار پایگاه، در کادر زیر وارد کنید.
..
پایگاه های نمایه شده




..
:: دوره 2، شماره 2 - ( 3-1405 ) ::
جلد 2 شماره 2 صفحات 44-31 برگشت به فهرست نسخه ها
اثر پروبیوتیک باسیلوس سابتیلیس بر ایمنی زایی واکسن خوراکی دوگانه استرپتوکوکوس اینیه، استرپتوکوکوس آگالاکتیه ریزپوشانی شده با آلژینات/کیتوزان در ماهی تیلاپیای نیل (Oreochromis niloticus)
الهام اسروش ، تکاور محمدیان* ، مجتبی علیشاهی ، محمد خسروی ، داریوش غریبی
چکیده:   (899 مشاهده)
مقدمه: استفاده از پربیوتیک ها به منظور افزایش ایمنی زایی و کارایی واکسن ها در آبزیان در دهه اخیر کاربرد زیادی یافته است. در این تحقیق اثر پروبیوتیک باسیلوس سابتیلیس بر ایمنی زایی واکسن خوراکی دوگانه استرپتوکوکوس اینیه، استرپتوکوکوس آگالاکتیه ریزپوشانی شده با آلژینات/کیتوزان در ماهی تیلاپیای نیل (Oreochromis niloticus) مورد سنجش قرار گرفت و  از نظر ایمنی زایی، کارایی اثرات آن بر شاخص های رشد و پارامترهای خونی مقایسه گردید.
مواد و روش ها: ابتدا باکتری دوگانه استرپتوکوکوس اینیه، استرپتوکوکوس آگالاکتیه به روش Internal Emulsification با موفقیت ریزپوشانی گردید. سپس ۶۰۰ قطعه ماهی تیلاپیای نیل با میانگین ۲/32±۳۰ گرم به ۱۰ گروه (هر گروه در سه تکرار ۲۰ عددی) شامل :A گروه ایمن شده با S. iniae، B: ایمن شده با S. agalactiae، C: ایمن شده با واکسن دوگانه، D: ایمن شده با S. iniae و باسیلوس سابتیلیس، E: ایمن شده با S. agalactiae و باسیلوس سابتیلیس، F: ایمن شده با واکسن دوگانه و باسیلوس سابتیلیس، G: ایمن شده با S. iniae ریزپوشانی شده و باسیلوس سابتیلیس، H: ایمن شده با S. agalactiae ریزپوشانی شده و باسیلوس سابتیلیس، I: ایمن شده با واکسن دوگانه ریزپوشانی شده و باسیلوس سابتیلیس، Control: گروه شاهد، تقسیم گردیدند. ماهی ها به مدت دو ماه در شرایط مشابه، تغذیه و نگه داری شدند و در روزهای صفر، ۳۰ و ۶۰ ضمن زیست سنجی ماهی ها، نمونه از هر تیمار اخذ و خونگیری و جداسای سرم انجام شد. شاخص های رشد و برخی شاخص های ایمنی و خونی ماهی بین تیمارها مقایسه گردید. سپس ماهیان هر گروه با باکتری زنده استرپتوکوکوس اگالاکتیه و استرپتوکوکوس اینیه چالش داده شدند و تلفات تیمارها تا ۱۴روز ثبت و بین تیمارها مقایسه صورت گرفت.
نتایج: نتایج نشان داد شاخص های رشد تحت تاثیر ایمن سازی قرار گرفته و شاخص های رشد شامل ضریب تبدیل غذایی، ضریب رشد ویژه و درصد افزایش وزن در تیمار ایمن شده با واکسن دوگانه ریزپوشانی شده و باسیلوس سابتیلیس، به طور معنی داری نسبت به تیمار شاهد  بهبود یافته بود (۰/05>p). در بین شاخص های ایمنی، عیار آنتی بادی ضد استرپتوکوکوس اگالاکتیه و ضد استرپتوکوکوس اینیه، میزان احیای NBT، میزان گلوبولین و پرتئین سرم و فعالیت لایزوزیم سرم به طور معنی داری در مراحل نمونه گیری در تیمار خوراکی ریزپوشانی و باسیلوس سابتیلیس بهبود یافته بود (۰/05>p). پارامترهای خونی شامل: هموگلوبین، هماتوکریت و گلبول­ های سفید خون بین تیمارهای تحقیق تفاوت معنی داری نشان دادند (۰/05>p). بررسی­ ها نشان داد که در هر دو مرحله­  نمونه­ گیری روزهای ۳۰ و ۶۰، بیش ترین تعداد گلبول­ های سفید مربوط به تیمارهای ریزپوشانی شده و باسیلوس سابتیلیس بود (۰/05>p). کم ترین میزان تلفات در چالش با باکتری زنده استرپتوکوکوس آگالاکتیه و استرپتوکوکوس اینیه، به ترتیب با 36/7% و ۳۰% مربوط به تیمار ایمن شده با واکسن دوگانه ریزپوشانی شده و باسیلوس سابتیلیس بود که نسبت به تیمار شاهد (۱۰۰%) کاهش معنی داری را نشان داد (۰/05>p).
بحث و نتیجه گیری: لذا می ­توان نتیجه گرفت که با توجه به نتایج مناسب ایمنی زایی پروبیوتیک باسیلوس سابتیلیس بر واکسن دوگانه ریزپوشانی شده در تحقیق جاری و مزیت های ویژه تجویز واکسن خوراکی، با تحقیقات تکمیلی امکان استفاده از این روش به عنوان یک جایگزین برای واکسن تزریقی وجود دارد.
واژه‌های کلیدی: آلژینات/کیتوزان، باسیلوس سابتیلیس، واکسن دوگانه، ریزپوشانی، ماهی تیلاپیای نیل
متن کامل [PDF 1309 kb]   (314 دریافت)    
نوع مطالعه: پژوهشي | موضوع مقاله: تخصصي
فهرست منابع
1. Akter, T., Ehsan, R., Paul, S.I., Ador, M.A.A., Rahman, A., Haque, N., Islam, T. and Rahman, M., 2022. Development of formalin killed vaccine candidate against streptococcosis caused by Enterococcus sp. in Nile tilapia. Aquaculture Reports. 27(1): 101371. doi: 10.1016/j.aqrep.2022.101371 [DOI]
2. Akagi, T., Baba, M. and Akashi, M., 2011. Biodegradable nanoparticles as vaccine adjuvants and delivery systems: regulation of immune responses by nanoparticle-based vaccine. Polymers in Nanomedicine. 247(1): 31-64. doi: 10.1007/12_2011_150 [DOI]
3. Bagheri, T., Hedayati, S.A., Yavari, V., Alizade, M. and Farzanfa, A., 2008. Growth, Survival and Gut Microbial Load of Rainbow Trout (Onchorhynchus mykiss) Fry Given Diet Supplemented with Probiotic during the Two Months of First Feeding. Turkish Journal of Fisheries and Aquatic Sciences. 8(1): 43-48.
4. Behera, T. and Swain, P., 2012. Antigen adsorbed surface modified poly-ɛ-caprolactone microspheres stimulates both adaptive and innate immune response in fish. Vaccine. 30(35): 5278-5284. doi: 10.1016/j.vaccine.2012.05.028 [DOI]
5. Baulny, M.O.D., Quentell, C., Fournierl, V., Amour, F. and Le gouvello, R., 1996. Effect of long-term oral administration of β-glucan as an immunostimulant or an adjuvant on some non-specific parameters of the immune response of turbot Scophthalmus maximus. Disease of Aquatic Organisms. 26(2): 139-147. doi: 10.3354/dao026139 [DOI]
6. De Souza, R.D., Batista, M.T., Luiz, W.B., Cavalcante, R.C.M., Amorim, J.H. and Bizerra, R.S.P., 2014. Bacillus subtilis spores as vaccine adjuvants: further insights into the mechanisms of action. PLoS One. 9(1): 87-100. doi: 10.1371/journal.pone.0087454 [DOI]
7. Ellis, A.E., 1990. Lysozyme assay. New Jersey: SOS Publication.
8. Firouzbakhsh, F., Noori, F., Khalesi, M.K. and Jani Khalili, K., 2011. Effects of a probiotic, protexin, on the growth performance and hematological parameters in the Oscar (Astronotus ocellatus) fingerlings. Fish Physiology and Biochemistry. 37(1): 833-842. doi: 10.1007/s10695. 011-9481-4 [DOI]
9. Gu, D.E., Yu, F.D., Yang, Y.X., Xu, M., Wei, H., Luo, D. and Hu, Y.C., 2019. Tilapia fisheries in Guangdong Province, China: Socio‐economic benefits, and threats on native ecosystems and economics. Fisheries Management and Ecology. 26(2): 97-107. doi: 10.1111/fme.12330 [DOI]
10. Ghafarifarsani, H., Hoseinifar, S.H., Molayemraftar, T., Raeeszadeh, M. and Doan, H.V., 2023. Pot Marigold (Calendula officinalis) Powder in Rainbow Trout (Oncorhynchus mykiss) Feed: Effects on Growth, Immunity, and Yersinia ruckeri Resistance. Aquaculture Nutrition. 23(4): 1-13. doi: 10.1155/2023/7785722 [DOI]
11. Giri, S.S., Kim, S.G., Kang, J.W., Kim, S.W., Kwon, J., Lee, S.B., Jung, W. and Park, S.C., 2021. Applications of carbon nanotubes and polymeric micro‐/nanoparticles in fish vaccine delivery: progress and future perspectives. Reviews in Aquaculture. 13(4): 1844-1863. doi: 10.1111/raq.12547 [DOI]
12. Halimi, M., Alishahi, M., Abbaspour, M.R., Ghorbanpoor, M. and Tabandeh, M.R., 2020. High efficacy and economical procedure of oral vaccination against Lactococcus garvieae/Streptococcus iniae in rainbow trout (Oncorhynchus mykiss). Fish & shellfish immunology. 99(1): 505-513. doi: 10.1016/j.fsi.2020.02.033 [DOI]
13. Harikrishnan, R., Kim, J.S., Balasundaram, C. and Heo, M.S., 2011. Immunomodulatory effects of chitin and chitosan enriched diets in Epinephelus bruneus against Vibrio alginolyticus infection. Aquaculture. 326(1): 46-52. doi: 10.1016/j.aquaculture.2011.11.034 [DOI]
14. Kumar, S.R., Ahmed, V.I., Parameswaran, V., Sudhakaran, R., Babu, V.S. and Hameed, A.S., 2008. Potential use of chitosan nanoparticles for oral delivery of DNA vaccine in Asian sea bass (Lates calcarifer) to protect from Vibrio (Listonella) anguillarum. Fish & Shellfish Immunology. 25(1): 47-56. doi: 10.1016/j.fsi.2007.12.004 [DOI]
15. Ke, X., Liu, Z., Chen, S., Chen, Z., Zhang, D., GAO, F. and Lu, M., 2021. The immune efficacy of a Streptococcus agalactiae immersion vaccine for different sizes of young tilapia. Aquaculture. 534(15): 62-73. doi: 10.1016/j.aquaculture.2020.736289 [DOI]
16. Liu, G., Zhu, J., Chen, K., Gao, T., Yao, H., Liu, Y. and Lu, C., 2016. Development of Streptococcus agalactiae vaccines for tilapia. Diseases of aquatic organisms. 122(2): 163-170. doi: 10.3354/dao03084 [DOI]
17. Laith, A.A., Ambak, M.A., Hassan, M., Sheriff, S.M., Nadirah, M. and Draman, A.S., 2017. Molecular identification and histopathological study of natural Streptococcus agalactiae infection in hybrid tilapia (Oreochromis niloticus). Vet World. 10(1): 101-111. doi: 10.14202/vetworld.2017.101-111 [DOI]
18. Lee, J.E., Kye, Y.C., Park, S.M., Shim, B.S., Yoo, S., Hwang, E. and Yun, C.H., 2020. Bacillus subtilis spores as adjuvants against avian influenza H9N2 induce antigen-specific antibody and T cell responses in White Leghorn chickens. Veterinary research. 51(1): 68. doi: 10.1186/s13567-020-00788-8 [DOI]
19. Lazado, C.C. and Caipang, C.M.A., 2014. Mucosal immunity and probiotics in fish. Fish and Shellfish Immunology. 39(1): 78-89. doi: 10.1016/j.fsi.2014.04.015 [DOI]
20. Mishra, A., Nam, G.H., Gim, J.A., Lee, H.E., Jo, A. and Kim, H.S., 2018. Current challenges of Streptococcus infection and effective molecular, cellular, and environmental control methods in aquaculture. Molecules and cells. 41(6): 495-505. doi: 10.14348/molcells.2018.2154 [DOI]
21. Munang'andu, H.M. and Evensen, Y., 2019. Correlates of protective immunity for fish vaccines. Fish and shellfish immunology. 85(1): 132-140. doi: 10.1016/j.fsi.2018.03.060 [DOI]
22. Masoomi Dezfooli, S., Gutierrez‐Maddox, N., Alfaro, A. and Seyfoddin, A., 2018. Encapsulation for delivering bioactives in aquaculture. Reviews in Aquaculture. 11(3): 631-660. doi: 10.1111/raq.12250 [DOI]
23. Nasipour, M., Mohammadian, T., Tabandeh, M.R. and Mesbah, M., 2019. Effects of Synbiotic with different level of βglocan and mananoligosaccharide with Lactobacillus casei on some gustrointestinal enzymes activity of Cyprinus carpio. Journal of Animal Environment. 8(4): 179-188. doi: 20.1001.1.27171388.1395.8.4.24.9 (In Persian) [DOI]
24. Piamsomboon, P., Srisuwatanasagul, S., Kongsonthana, K. and Wongtavatchai, J., 2021. Streptococcus agalactiae infection caused spinal deformity in juvenile red tilapia (Oreochromis sp.). Journal of Fish Diseases. 45(4): 603-606. doi: 10.1111/jfd.13568 [DOI]
25. Plant, K.P., LaPatra, S.E. and Cain, K.D., 2009. Vaccination of rainbow trout, Oncorhynchus mykiss (Walbaum), with recombinant and DNA vaccines produced to Flavobacterium psychrophilum heat shock proteins 60 and 70. Journal of fish diseases. 32(6): 521-534. doi: 10.1111/j.1365-2761.2009.01008.x [DOI]
26. Pandiyan, P., Balaraman, D., Thirunavukkarasu, R., George, E.G.J., Subaramaniyan, K., Manikkam, S. and Sadayappan, B., 2013. Probiotics in aquaculture. Drug Invention Today. 5(1): 55-59. doi: 10.1016/j.dit.2013.03.003 [DOI]
27. Ranjbar, A., Masbah, M., Tabandeh, M.R., Mohammadian, T., Gharibi, D. and Alishahi, M., 2019. Comparative effects of probiotic bacteria, Lactobacillus pentosus and Lactobacillus plantarum, on growth factors and digestive enzymes activities in rainbow trout (Onchorynchus mykiss). Journal of Animal Environment. 10(3): 175-184. doi: 20.1001.1.27171388.1397.10.3.23.0 (In Persian) [DOI]
28. Silva, B.C., Martins, M.L., Jatob, A., Neto, C.B., Vieira, F.N. and Mourio, L.P., 2009. Hematological and immunological responses of Nile tilapia after polyvalent vaccine administration by different routes, Pesqui. Agropecu Bras. 29(11): 874-880. doi: 10.1590/S0100-736X2009001100002 [DOI]
29. Shefat, S.H.T., 2018. Vaccines for use in finfish aquaculture. Acta Scientific Pharmaceutical Sciences. 2(11): 15-19.
30. Soltani, M., Lymbery, A., Song, S.K. and Shekarabi, S.P.H., 2019. Adjuvant effects of medicinal herbs and probiotics for fish vaccines. Reviews in Aquaculture. 11(4): 1325-1341. doi: 10.1111/raq.12295 [DOI]
31. Song, M., Hong, H.A., Huang, J.M., Colenutt, C. and Khang, D.D., 2012. Killed Bacillus subtilis spores as a mucosal adjuvant for an H5N1 vaccine. Vaccine. 30(1): 3266-3277. doi: 10.1016/j.vaccine.2012.03.016 [DOI]
32. Selvaraj, V., Sampath, K. and Sekar, V., 2006. Adjuvant and immunostimulatory effects of b-glucan administration in combination with lipopolysaccharide enhance survival and some immune parameters in carp challenged with Aeromonas hydrophila. Vet Immunol Immunopathol. 114(1): 15-24. doi: 10.1016/j.vetimm.2006.06.011 [DOI]
33. Salas-Leiton, E., Anguis, V., Martín-Antonio, B., Crespo, D., Planas, J.V., Infante, C., Cañavate, J.P. and Manchado, M., 2010. Effects of stocking density and feed ration on growth and gene expression in the Senegalese sole (Solea senegalensis): Potential effects on the immune response. Fish and Shellfish Immunology. 28(2): 296-302. doi: 10.1016/j.fsi.2009.11.006 [DOI]
34. Wang, Q., Fu, T., Li, X., Luo, Q., Huang, J., Sun, Y. and Wang, X., 2019. Cross-immunity in Nile tilapia vaccinated with Streptococcus agalactiae and Streptococcus iniae vaccines. Fish & Shellfish Immunology. 97(1): 382-389. doi: 10.1016/j.fsi.2019.12.021 [DOI]
35. Yao, Y.Y., Chen, D.D., Cui, Z.W., Zhang, X.Y., Zhou, Y.Y., Guo, X. and Zhang, Y.A., 2019. Oral vaccination of tilapia against Streptococcus agalactiae using Bacillus subtilis spores expressing Sip. Fish & shellfish immunology. 86(1): 999-1008. doi: 10.1016/j.fsi.2018.12.060 [DOI]
36. Yogeshwari, G., Jagruthi, C. and Ramasamy, J., 2015. Poly D, L-lactide-co-glycolic acid (PLGA)-encapsulated CpG-oligonucleotide (ODN) on immune response in Cyprinus carpio against Aeromonas hydrophila. Journal of Aquaculture Research and Development. 6(1): 327-337. doi: 10.4172/2155-9546.1000327 [DOI]
37. Zhang, Z., Niu, J., Li, Q., Huang, Y., Jiang, B., Wu, Y., Huang, Y. and Jian, J., 2021. HMG20A from Nile tilapia (Oreochromis niloticus) involved in the immune response to bacterial infection. Fish & Shellfish Immunology. 119(1): 499-507. doi: 10.1016/j.fsi.2021.10.032 [DOI]
38. Zamri-Saad, M., Amal, M.N.A., Siti-Zahrah. A. and Zulkafli, A.R., 2014. Control and prevention of streptococcosis in cultured tilapia in Malaysia: a review. Pertanika J Trop Agric Sci. 37(2): 389-410.
ارسال پیام به نویسنده مسئول

ارسال نظر درباره این مقاله
نام کاربری یا پست الکترونیک شما:

CAPTCHA



XML   English Abstract   Print


Download citation:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:

Osroush E, Mohammadian T, Alishahi M, Khosravi M, Gharibi D. Effect of Bacillus subtilis on immunogenicity of Streptococcus agalactiae and Streptococcus iniae bivalent oral vaccine encapsulated with Alginate/chitosan in Nile tilapia (Oreochromis niloticus). , Journalaer. 2026; 2 (2) :31-44
URL: http://journalaer.com/article-1-109-fa.html

اسروش الهام، محمدیان تکاور، علیشاهی مجتبی، خسروی محمد، غریبی داریوش. اثر پروبیوتیک باسیلوس سابتیلیس بر ایمنی زایی واکسن خوراکی دوگانه استرپتوکوکوس اینیه، استرپتوکوکوس آگالاکتیه ریزپوشانی شده با آلژینات/کیتوزان در ماهی تیلاپیای نیل (Oreochromis niloticus). , پژوهش های محیط زیست جانوری. 1405; 2 (2) :31-44

URL: http://journalaer.com/article-1-109-fa.html



بازنشر اطلاعات
Creative Commons License این مقاله تحت شرایط Creative Commons Attribution-NonCommercial 4.0 International License قابل بازنشر است.
دوره 2، شماره 2 - ( 3-1405 ) برگشت به فهرست نسخه ها
پژوهش های محیط زیست جانوری Journal of Animal Environmental Research
Persian site map - English site map - Created in 0.18 seconds with 39 queries by YEKTAWEB 4779