[صفحه اصلی ]   [Archive] [ English ]  
:: صفحه اصلي :: درباره نشريه :: آخرين شماره :: تمام شماره‌ها :: جستجو :: ثبت نام :: ارسال مقاله :: تماس با ما ::
بخش‌های اصلی
صفحه اصلی::
اطلاعات نشریه::
آرشیو مجله و مقالات::
برای نویسندگان::
برای داوران::
ثبت نام و اشتراک::
تماس با ما::
تسهیلات پایگاه::
بایگانی مقالات زیر چاپ::
::
جستجو در پایگاه

جستجوی پیشرفته
..
دریافت اطلاعات پایگاه
نشانی پست الکترونیک خود را برای دریافت اطلاعات و اخبار پایگاه، در کادر زیر وارد کنید.
..
پایگاه های نمایه شده




..
:: دوره 1، شماره 4 - ( 10-1404 ) ::
جلد 1 شماره 4 صفحات 68-59 برگشت به فهرست نسخه ها
اثر منگنز بر آنزیم های گوارشی و بافت شناسی روده در فیل ماهیان (Huso huso) جوان پرورشی
فاطمه همتی ، حسین خارا* ، حبیب وهابزاده رودسری ، رضوان اله کاظمی
چکیده:   (1047 مشاهده)
مقدمه‌: این تحقیق با هدف تعیین اثر منگنز جیره غذایی بر آنزیم ­های گوارشی و بافت روده در فیل ماهیان (Huso huso) جوان پرورشی انجام گرفت.
مواد و روش ­ها: بدین منظور 180 قطعه فیل ماهی جوان (به ترتیب با میانگین وزن 3/05± 266 گرم و طول کل 0/49±38/23 سانتی­ متر) انتخاب گردید. در این مطالعه 6 تیمار و هر تیمار با 3 تکرار، با غلظت ­های 5 (Mn1)، 10 (Mn2)، 15 (Mn3)، 20 (Mn4) و 25 (Mn5) میلی ­گرم سولفات­ منگنز­ مونوهیدرات (MnSO4H2O) در هر کیلوگرم غذا و شاهد (Mn0) بدون افزودن مکمل MnSO4 در مرکز تکثیر و بازسازی ذخایر ژنتیکی ماهیان­ خاویاری دکتر بهشتی سد سنگر شهرستان رشت به مدت 2 ماه انجام شد. مقدار مکمل مورد نظر پس از توزین به همراه آب دیونیزه شده، به غذای پودری کارخانه­ای اضافه شد. ماهیان در پایان هر ماه بیومتری شدند. فاکتورهای فیزیکی و شیمیایی آب (درجه حرارت، اکسیژن و pH) به طور روزانه اندازه ­گیری و ثبت شد. در پایان آزمایش از هر تکرار 3 قطعه ماهی انتخاب و جهت سنجش آنزیم ­های گوارشی از ساقه دمی خونگیری شد. هم چنین برای مطالعات بافت ­شناسی از قسمت ­های مختلف روده (قدامی- میانی و خلفی) نمونه ­برداری صورت گرفت.
نتایج‌: نتایج شاخص­ های آنزیم ­های گوارشی نشان داد، مقدار آنزیم­ های آمیلاز، لیپاز، پروتئاز دارای اختلاف معنی­ داری بین برخی از تیمارهای آزمایشی و گروه شاهد بود (0/05>p) و بیشینه و کمینه این آنزیم ­ها به ترتیب در تیمار Mn2 و Mn5 مشاهده گردید. مطالعات بافتی اگرچه خونریزی، پرخونی، نکروزه شدن، واکوئله شدن را در قسمت­ های مختلف بافت روده در همه تیمارها حتی تیمار شاهد نشان داد، اما بهترین وضعیت بافتی روده از نظر کاهش سطح و نوع عارضه در تیمار Mn3 وجود داشت.
بحث و نتیجه ­گیری: براساس نتایج این مطالعه افزودن کوتاه مدت سطوح 15-10 میلی­ گرم منگنز در هر کیلوگرم جیره غذایی فیل ماهیان، باعث اثر بخشی مثبت و بهبود فعالیت آنزیم­های گوارشی و هم چنین کاهش آسیب­ های بافتی روده می ­شود.
واژه‌های کلیدی: فیل ماهی (Huso huso)، جیره غذایی، سولفات منگنز، آنزیم های گوارشی، بافت شناسی روده
متن کامل [PDF 1130 kb]   (338 دریافت)    
نوع مطالعه: پژوهشي | موضوع مقاله: عمومى
فهرست منابع
1. 1. Asaikkutti, A., Bhavan, P.S., Vimala, K., Karthik, M. and Cheruparambath, P., 2016. Dietary supplementation of green synthesized manganese-oxide nanoparticles and its effect on growth performance, muscle composition and digestive enzyme activities of the giant freshwater prawn Macrobrachium rosenbergii. Journal of Trace Elements in Medicine and Biology. 35: 7-17. https://doi.org/10.1016/j.jtemb.2016.01.005
2. 2. Aschner, J.L. and Aschner, M., 2005. Nutritional aspects of manganese homeostasis. Molecular Aspects of Medicine. 26(4): 353-362.
3. 3. Au, D.W.T., 2004. The application of histo cytopathological biomarkers in marine pollution monitoring: a review. Marine pollution bulletin. 48(9-10): 817-834.‌ ttps://doi.org/10.1016/j.marpolbul.2004.02.032
4. 4. Barišić, J., Marijić, V.F., Mijošek, T., Čož-Rakovac, R., Dragun, Z., Krasnići, N. and Erk, M., 2018. Evaluation of architectural and histopathological biomarkers in the intestine of brown trout Salmo trutta Linnaeus, 1758 challenged with environmental pollution. Science of the total environment. 642: 656-664.‌ https://doi.org/10.1016/j.scitotenv.2018.06.045
5. 5. Bernfeld, P., 1955. Enzymes Carbohydrate Metabolism. In Methods in Enzymology Academic Press. 17: 149-158.
6. 6. Bonsignore, M., Manta, D.S., Mirto, S., Quinci, E.M., Ape, F., Montalto, V. and Sprovieri, M., 2018. Bioaccumulation of heavy metals in fish, crustaceans, molluscs and echinoderms from the Tuscany coast. Ecotoxicology and environmental safety. 162: 554-562.‌ https://doi.org/10.1016/j.ecoenv.2018.07.044
7. 7. Debnath, D., Pal, A.K., Sahu, N.P., Yengkokpam, S., Baruah, K., Choudhury, D. and Venkateshwarlu, G., 2007. Digestive enzymes and metabolic profile of Labeo rohita fingerlings fed diets with different crude protein levels. Comparative Biochemistry and Physiology Part B: Biochemistry and Molecular Biology. 146(1): 107-114.‌ https://doi.org/10.1016/j.cbpb.2006.09.008.
8. 8. Farag, A.M., Nimick, D.A., Kimball, B.A., Church, S.E., Harper, D.D. and Brumbaugh, W.G., 2007. Concentrations of metals in water, sediment, biofilm, benthic macroinvertebrates, and fish in the Boulder River watershed, Montana, and the role of colloids in metal uptake. Archives of environmental contamination and toxicology. 52: 397-409.‌ https://doi.org/10.1007/s00244-0 05-0021-z
9. 9. Gómez-Requeni, P., Bedolla-Cázares, F., Montecchia, C., Zorrilla, J., Villian, M., Toledo-Cuevas, E.M. and Canosa, F., 2013. Effects of increasing the dietary lipid levels on the growth performance, body composition and digestive enzyme activities of the teleost pejerrey Odontesthes bonariensis. Aquaculture. 416: 15-22.‌ https://doi.org/10.1016/j.aquaculture.2013.08.027
10. 10. Halver, J.E., 2001. My 50 years in fish nutrition, 1949-99. Aquaculture Research. 32(8): 615-622.‌
11. 11. Hamlin, H.J., 2006. Nitrate toxicity in Siberian sturgeon Acipenser baeri. Aquaculture. 253(1): 688-693.‌ https://doi.org/10.1016/j.aquaculture.2005.08.025.
12. 12. Jain, K.L., 2009. Chronic effects of heavy metals on the activity of some digestive and metabolic enzymes in Cyprinus carpio. Annals of Biology. 25(1): 63-67.
13. 13. Kharkan, J., Sayadi, M.H., Hajiani, M., Rezaei, M.R., and Savabieasfahani, M., 2023. Toxicity of nickel oxide nanoparticles in Capoeta fusca, using bioaccumulation, depuration, and histopathological changes. Global Journal of Environmental Science and Management. 9(3): 427-444.‌ https://doi.org/10.22034/gjesm.2023.03.05 (In Pershian)
14. 14. Lall, S.P. and Milley, J.E., 2008. Trace mineral requirements of fish and crustaceans. Trace elements in animal production systems. 203-214.‌ https://doi.org/10. 3920/978-90-8686-638-0
15. 15. Lan, C.C. and Pan, B.S., 1993. In-vitro digestibility simulating the proteolysis of feed protein in the midgut gland of grass shrimp Penaeus monodon. Aquaculture. 109(1): 59-70.‌ https://doi.org/10.1016/0044-8486(93)904 86-I
16. 16. Liu, H., Fu, S., Zhang, S., Ding M. and Wang A., 2020. Lead induces structural damage, microbiota dysbiosis and cell apoptosis in the intestine of juvenile bighead carp Hypophthalmichthys nobilis. Aquaculture. 528: 735573. https://doi.org/10.1016/j.aquaculture.2020.735573
17. 17. Liu, Y., Wang, J.Y., Li, B.S., Qiao, H.J., Liu, X.D., Hao, T.T. and Wang, X.Y., 2018. Dietary manganese requirement of juvenile hybrid grouper, Epinephelus lanceolatus× E. fuscoguttatus. Aquaculture Nutrition. 24(1): 215-223. https://doi.org/10.1111/anu.12549
18. 18. Mansouri, B., Rahmani, R., Azadi, N.A., Davari, B., Johari, S.A. and Sobhani, P., 2015. Effect of waterborne copper oxide nanoparticles and copper ions on guppy Poecilia reticulata. Bioaccumulation and histopathology. Journal of Advances in Environmental Health Research. 3: 215 - 223. https://doi.org/10.22102/jaehr.2015.40205 (In Pershian)
19. 19. Mohseni, M., Pourali, H.R., Kazemi, R. and Bai, S.C., 2014. Evaluation of the optimum dietary protein level for the maximum growth of juvenile beluga Huso huso L. 1758. Aquaculture Research. 45(11): 1832-1841.‌ https://doi.org/10.1111/are.12134 (In Pershian)
20. 20. Muralisankar, T., Bhavan, P.S., Radhakrishnan, S., Seenivasan, C., Manickam, N. and Srinivasan, V., 2014. Dietary supplementation of zinc nanoparticles and its influence on biology, physiology and immune responses of the freshwater prawn, Macrobrachium rosenbergii. Biological trace element research. 160(1): 56-66.‌ https://doi.org/10.1007/s12011-014-0026-4
21. 21. Musharraf, M. and Khan, M.A., 2021. Dietary manganese requirement of fingerling Indian major carp, Labeo rohita (Hamilton) estimated by growth, tissue manganese concentration and hepatic manganese-superoxide dismutase activity. Aquaculture. 540: 734-736. https://doi.org/10.1016/j.aquaculture.2021.7367 34.
22. 22. Naz, S., Hussain, R., Ullah, Q., Chatha, A.M.M., Shaheen, A. and Khan, R.U., 2021. Toxic effect of some heavy metals on hematology and histopathology of major carp Catla catla. Environmental science and pollution research. 28: 6533-6539.‌ https://doi.org/10.1007/s11356. 020-10980-0.
23. 23. NRC (National Research Council). 2011. Nutrient Requirements of Fish and Shrimp. National Academies Press, Washington, DC, 376 + XVI.
24. 24. Ross, N.W., Firth, K.J., Wang, A., Burka, J.F. and Johnson, S.C., 2000. Changes in hydrolytic enzyme activities of naive Atlantic salmon Salmo salar skin mucus due to infection with the salmon louse Lepeophtheirus salmonis and cortisol implantation. Diseases of Aquatic Organisms. 41(1): 43-51.‌ https://doi: 10.3354/dao041043.
25. 25. Sadeghi, P., Tootooni, M.M. and Molaei, S., 2019. Use of Intestinal Tissue of Pomadasys kaakan and Lutjanus johnii as Biomarkers of Contamination in The Oman Sea.‌ (In Pershian)
26. 26. Sayadi, M.H. and Kharkan, J., 2022. Investigating the histological damage of different heavy metals on aqueduct fish Capoeta fusca. Aquaculture Sciences. 10(2): 149161.‌ (In Pershian)
27. 27. Sotoudeh, E., Amiri Behrosi, A., Bahadori, R., Habibi, H. and Morammazi, S., 2019. Nonspecific immune responses, activity of digestive enzymes and body composition of rainbow trout Oncorhynchus mykiss fed diets containing manganese sulfate nanoparticles. Journal of Animal Research Iranian Journal of Biology. 32(4): 269-282.‌ (In Pershian)
28. 28. Sharifpour, I., Hallajian, A. and Kazemi, R., 2014. Histology Laboratorial Techniques for Aquatics. Firs edition, Iranian Fisheries Research Organization, Tehran. 345 p. (In Pershian)
29. 29. Shaw, B.J., Al-Bairuty, G. and Handy, R.D., 2012. Effects of waterborne copper nanoparticles and copper sulphate on rainbow trout, Oncorhynchus mykiss: physiology and accumulation. Aquatic Toxicology. 116: 90-101.‌ https://doi.org/10.1016/j.aquatox.2012. 02.032
30. 30. Shihabi, Z.K. and Bishop, C., 1971. Simplified turbidimetric assay for lipase activity. Clinical chemistry. 17(12): 1150-1153.‌ https://doi.org/10.1093/clinchem/17. 12.1150.
31. 31. Tchounwou, P.B., Yedjou, C.G., Patlolla, A.K. and Sutton, D.J., 2012. Heavy metal toxicity and the environment. Molecular, clinical and environmental toxicology. Environmental toxicology. 3: 133-164.‌ https://doi.org/10.1007/978-3-7643-8340-4-6
32. 32. Torfi Mozanzadeh, M., Yaghoubi, M., Yavari, V., Agh, N., Marammazi, J.G. and Topic Popovic, N., 2015. Reference intervals for haematological and plasma biochemical parameters in sobaity sea bream juveniles Sparidentex hasta, Valenciennes 1830. Comparative Clinical Pathology. 24: 1501-1507.‌ https://doi.org/ 10.1007/s00580-015-2107-y (In Pershian)
33. 33. Verkleji J.A.S., 1993. The effects of heavy metals stress on higher plants and their use as biomonitors. Plant as bioindicators: indicators of heavy metals in the terrestrial environment. VCH, New York. 415- 424.
34. 34. Xiong, D.M., Xie, C.X., Zhang, H.J. and Liu, H.P., 2011. Digestive enzymes along digestive tract of a carnivorous fish Glyptosternum maculatum Sisoridae, Siluriformes. Journal of Animal Physiology and Animal Nutrition. 95(1): 56-64.‌ https://doi.org/10.1111/j.1439. 0396.2009.00984.x
35. 35. Yan, T., Teo, L.H. and Sin, Y.M., 1996. Effects of metals on {alpha}-amylase activity in the digestive gland of the green mussel, Perna viridis L. Bulletin of environmental contamination and toxicology. 56(4): 677-682.
36. 36. Ye, C.X., Tian, L.X., Yang, H.J., Liang, J.J., Niu, J. and Liu, Y.J., 2009. Growth performance and tissue mineral content of juvenile grouper Epinephelus coioides fed diets supplemented with various levels of manganese. Aquaculture Nutrition. 15(6): 608-614. https://doi.org/10. 1111/j.1365-2095.2008.00628.x
ارسال پیام به نویسنده مسئول

ارسال نظر درباره این مقاله
نام کاربری یا پست الکترونیک شما:

CAPTCHA


XML   English Abstract   Print


Download citation:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:

Hemmati F, Khara H, Vahaabzadeh Roudsari H, Kazemi R. The Effect of Manganese on digestive enzymes and intestinal histology in Reared Young Beluga (Huso huso). , Journalaer. 2025; 1 (4) :59-68
URL: http://journalaer.com/article-1-48-fa.html

همتی فاطمه، خارا حسین، وهابزاده رودسری حبیب، کاظمی رضوان اله. اثر منگنز بر آنزیم های گوارشی و بافت شناسی روده در فیل ماهیان (Huso huso) جوان پرورشی. , پژوهش های محیط زیست جانوری. 1404; 1 (4) :59-68

URL: http://journalaer.com/article-1-48-fa.html



بازنشر اطلاعات
Creative Commons License این مقاله تحت شرایط Creative Commons Attribution-NonCommercial 4.0 International License قابل بازنشر است.
دوره 1، شماره 4 - ( 10-1404 ) برگشت به فهرست نسخه ها
پژوهش های محیط زیست جانوری Journal of Animal Environmental Research
Persian site map - English site map - Created in 0.21 seconds with 39 queries by YEKTAWEB 4779